Генетична варіація в чотирьох генах зрілості та вплив нечутливості до фотоперіоду на компоненти врожайності та на періоди тривалості росту сої
Анотація
Соя (Glycine max (L.) Merr.) — культура типова короткого дня і теплолюбна. Відсутність або низька чутливість до фотоперіоду необхідна для адаптації культур короткого дня до високих широт. Нечутливість до фотоперіоду в сої контролюється двома генетичними системами і включає три важливі гени зрілості: E1, репресор для двох ортологів сої Arabidopsis FLOWERING LOCUS T, і E3 і E4, які є генами фітохрому A. Метою даної роботи було дослідити роль чотирьох генів зрілості (від Е1 до Е4) на компоненти врожайності, якість насіння та фазовий розвиток майже ізогенних за генами Е ліній сої: лінії короткого дня (SD) з генотипом e1E2E3E4e5E7. , e1E2E3e4e5E7, E1e2e3E4e5E7 та фотоперіодичні нечутливі (PPI) лінії з генотипом e1e2E3E4e5E7, e1e2e3E4e5E7 в умовах тривалого фотоперіоду (природна тривалість дня 50 широти) та умов короткого дня. Результати дослідження показали, що процеси розвитку сої за умов різної тривалості дня залежать від домінантного/рецесивного стану основних генів зрілості. Крім того, реакція на фотоперіод залежить від певних комбінацій генів. Лінії SD починали цвісти в середньому на 16,9% пізніше за умов природного тривалого фотоперіоду. Домінантні алелі генів Е1 і Е3 подовжували фази перед і після цвітіння в умовах тривалого і короткого фотоперіодів. Домінантний алель гена Е1 затримував початок цвітіння в середньому на 26,9%, а період повної стиглості на 39,8% порівняно з рецесивним е1. Домінантний алель гена Е3 порівняно з рецесивним е3 подовжував перехід до цвітіння в середньому на 16,1%, а період повної стиглості – на 27,1%. Домінантний алель гена Е2 подовжував тривалість вегетативної фази на 20 % в умовах тривалого фотоперіоду. Достовірного впливу домінантного алеля Е4 на тривалість вегетативної та генеративної фаз розвитку сої у наших дослідженнях не виявлено. Лінії PPI починають цвітіння за умов тривалого та короткого фотоперіоду одночасно, але фази цвітіння та повної стиглості насіння у лінії з генотипом e1e2e3E4e5E7 настали раніше, через втрату чутливості до фотоперіоду гена E3. Лінія PPI з генотипом e1e2e3E4e5E7 виявилася найбільш нечутливою до впливу різної тривалості фотоперіоду серед досліджуваних ліній. Показано, що домінантні алелі генів зрілості Е1–Е4 знижували параметри маси насіння на рослину та маси 1000 насінин за умов природного тривалого фотоперіоду порівняно з рецесивними алелями цих генів. Максимальну масу насіння на рослину та масу 1000 насінин зафіксовано у лінії PPI з генотипом e1e2e3E4e5E7. Слід зазначити, що домінантні алелі Е1 і Е3 підвищували врожайність в умовах короткого фотоперіоду. Гени зрілості по-різному впливали на біохімічний склад насіння.Показано, що лінії сої з домінантними генами Е1, Е2 та Е4 показали вищий вміст крохмалю та менший вміст загального азоту та олії в насінні в умовах природного фотоперіоду порівняно з лініями з рецесивними алелями цих генів. Домінантний алель E3 знижував вміст олії та не впливав на крохмаль і загальний вміст азоту в насінні в умовах тривалого дня порівняно з рецесивним алелем e3. Аналіз впливу фотоперіоду на строки фенофаз, показники структури врожаю та біохімічний склад насіння рослин сої з різною чутливістю до фотоперіоду показав, що лінія PPI з генотипом e1e2e3E4e5E7 найбільш адаптована до природних умов 50° широти. . Лінія PPI з генотипом e1e2e3E4e5E7 характеризувалася найкоротшими фазами днів від посіву до цвітіння та повної стиглості. В результаті ця лінія мала найкоротший вегетаційний період без зниження врожайності та якості насіння. Зрозуміло, що фотоперіод мав сильний вплив на всі стадії розмноження рослин і часто діяв опосередковано, як показано у відстрочених реакціях, виражених на пізніших фазах розвитку. Отримані результати можуть бути корисними для селекції сортів сої, адаптованих до кліматичних умов вирощування Харківської області.
Посилання
Abugalieva, S., Didorenko, S., Anuarbek, S., Volkova, L., Gerasimova, Y., Sidorik, I., & Turuspekov, Y. (2016). Assessment of soybean flowering and seed maturation time in different latitude regions of Kazakhstan. PLoS One, 11(12), e0166894.
Ali, M. F., Brown, P., Thomas, J., Salmeron, M., & Kawashima, T. (2022). Effect of assimilate competition during early seed development on the pod and seed growth traits in soybean. Plant Reproduction, 35(3), 179–188.
Assefa, Y., Purcell, L. C., Salmeron, M., Naeve, S., Casteel, S. N., Kovács, P., Archontoulis, S., Licht, M., Below, F., Kandel, H., Lindsey, L. E., Gaska, J., Conley, S., Shapiro, C., Orlowski, J. M., Golden, B. R., Kaur, G., Singh, M., Thelen, K., Laurenz, R., Davidson, D., & Ciampitti, I. A. (2019). Assessing variation in US soybean seed composition (protein and oil). Frontiers in Plant Science, 10, 298.
Bueno, R. D., Borges, L. L., Good God, P. I. V., Piovesan, N. D., Teixeira, A. I., Cruz, C. D., & De Barros, E. G. (2018). Quantification of anti-nutritional factors and their correlations with protein and oil in soybeans. Anais da Academia Brasileira de Ciências, 90(1), 205–217.
Cao, D., Takeshima, R., Zhao, C., Liu, B., Jun, A., & Kong, F. (2017). Molecular mechanisms of flowering under long days and stem growth habit in soybean. Journal of Experimental Botany, 68(8), 1873–1884.
Chiluwal, A., Kawashima, T., & Salmeron, M. (2021). Soybean seed weight responds to increases in assimilate supply during late seed-fill phase. Journal of Crop Improvement, 36(2) 222–238.
Cober, E. R., Curtis, D. F., Stewart, D. W., & Morrison, M. J. (2014). Quantifying the effects of photoperiod, temperature and daily irradiance on flowering time of soybean isolines. Plants, 3(4), 476–497.
Dhungana, S. K., Kulkarni, K. P., Kim, M., Ha, B. K., Kang, S., Song, J. T., Shin, D. H., & Lee, J. D. (2017). Environmental stability and correlation of soybean seed starch with protein and oil contents. Plant Breeding and Biotechnology, 5(4), 293–303.
Dhungana, S. K., Kulkarni, K. P., Park, C. W., Jo, H., Song, J. T., Shin, D. H., & Lee, J. D. (2017). Mapping quantitative trait loci controlling soybean seed starch content in an interspecific cross of ‘Williams 82’ (Glycine max) and ‘PI 366121’ (Glycine soja). Plant Breeding, 136(3) 379–385.
Dong, L., Hou, Z., Li, H., Li, Z., Fang, C., Kong, L., Li, Y., Du, H., Li, T., Wang, L., He, M., Zhao, X., Cheng, Q., Kong, F., & Liu, B. (2022). Agronomical selection on loss‐of‐function of Gigantea simultaneously facilitates soybean salt tolerance and early maturity. Journal of Integrative Plant Biology, 61(10), 13332.
Hider, N. H. A.-H., & Zhmurko, V. (2020). Influence of different photoperiodic conditions on the protein and oil content in soybean seeds (Glycine max (L.) Merr.). ScienceRise: Biological Science, 22, 10–15.
Jiang, B., Nan, H., Gao, Y., Tang, L., Yue, Y., Lu, S., Ma, L., Cao, D., Sun, S., Wang, J., Wu, C., Yuan, X., Hou, W., & Liu, B. (2014). Allelic combinations of soybean maturity loci E1, E2, E3 and E4 result in diversity of maturity and adaptation to different latitudes. PLoS One, 9(8), e106042.
Kantolic, A. G., Peralta, G. E., & Slafer, G. A. (2013). Seed number responses to extended photoperiod and shading during reproductive stages in indeterminate soybean. European Journal of Agronomy, 51, 91–100.
Kawasakia, Y., Yamazakia, R., Katayamaa, K., Yamadac, T., & Funatsuk, H. (2018). Effects of maturity genes E2 and E3 on yield formation in soybean cultivar Enrei in warm region, Fukuyama in Japan. Plant Production Science, 21(4), 387–397.
Kumagai, E., Yamada, T., & Hasegawa, T. (2020). Is the yield change due to warming affected by photoperiod sensitivity? Effects of the soybean E4 locus. Food and Energy Security, 9(1), e186.
Kumawat, G., Yadav, A., Satpute, G. K., Gireesh, C., Patel, R., Shivakumar, M., Gupta, S., Chand, S., & Bhatia, V. S. (2019). Genetic relationship, population structure analysis and allelic characterization of flowering and maturity genes E1, E2, E3 and E4 among 90 Indian soybean landraces. Physiology and Molecular Biology of Plants, 25(2), 387–398.
Langewisch, T., Lenis, J., Jiang, G. L., Wang, D., Pantalone, V., & Bilyeu, K. (2017). The development and use of a molecular model for soybean maturity groups. BMC Plant Biology, 91, 1–13.
Liu, X., Wu, J.-A., Re, H., Qi, Y., Li, C., Cao, J., Zhang, X., Zhang, Z., Cai, Z., & Gai, J. (2017). Genetic variation of world soybean maturity date and geographic distribution of maturity groups. Breeding Science, 67(3), 221–232.
Lui, L. F., Gao, L., Zhang, L. X., Cai, Y. P., Song, W. W., Chen, L., Yuan, S., Jiang, B. J., Sun, S., Wu, C. X., Hou, W. S., & Han, T. F. (2022). Co-silencing E1 and its homologs in an extremely late-maturing soybean cultivar confers super-early maturity and adaptation to high-latitude short-season regions. Journal of Integrative Agriculture, 21(2), 326–335.
Nico, M., Miralles, D. J., & Kantolic, A. G. (2015). Post-flowering photoperiod and radiation interaction in soybean yield determination: Direct and indirect photoperiodic effects. Field Crops Research, 176, 45–55.
Ort, N. W. W., Morrison, M. J., Cober, E. R., Samanfar, B., & Lawley, Y. E. (2022). Photoperiod affects node appearance rate and flowering in early maturing soybean. Plants, 11(7), 871.
Piper, E. L., & Boote, K. I. (1999). Temperature and cultivar effects on soybean seed oil and protein concentrations. Journal of the American Oil Chemists’ Society, 76, 1233–1241.
Poeta, F. B., Rotundo, J. L., Borrás, L., & Westgate, M. E. (2014). Seed water concentration and accumulation of protein and oil in soybean seeds. Crop Science, 54(6), 2752–2759.
Saryoko, A., Homma, K., Lubis, I., & Shiraiw, T. (2017). Plant development and yield components under a tropical environment in soybean cultivars with temperate and tropical origins. Plant Production Science, 20(4), 375–383.
Song, W., Yang, R., Wu, T., Wu, C., Sun, S., Zhang, S. Jiang, B., Tian, S., Liu, X., & Han, T. (2016). Analyzing the effects of climate factors on soybean protein, oil contents, and composition by extensive and high-density sampling in China. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 64(20), 4121–4130.
Tsubokura, Y., Matsumura, H., Xu, M. L., Liu, B. H., Nakashima, H., Anai, T., Kong, F. J., Yuan, X. H., Kanamori, H., Katayose, Y., Takahashi, R., Harada, K., & Abe, J. (2013). Genetic variation in soybean at the maturity locus E4 is involved in adaptation to long days at high latitudes. Agronomy, 3(1), 117–134.
Wang, C., Liu, X., Hao, X., Pan, Y., Zong, C., Zeng, W., Wang, W., Xing, G., He, J., & Gai, J. (2022). Evolutionary variation of accumulative day length and accumulative active temperature required for growth periods in global soybeans. Agronomy, 12(4), 962.
Wang, L., Li, H., He, M., Dong, L., Huang, Z., Chen, L., Nan, H., Kong, F., Liu, B., & Zhao X. (2022). Gigantea orthologs, E2 members, redundantly determine photoperiodic flowering and yield in soybean. Journal of Integrative Plant Biology, 65(1), 188–202.
Watanabe, S., Harada, K., & Abe, J. (2012). Genetic and molecular bases of photoperiod responses of flowering in soybean. Breed Science, 61(5), 531–543.
Xia, Z. J., Watanabe, S., Yamada, T., Tsubokura, Y., Nakashima, H., Zhai, H., Anai, T., Sato, S., Yamazaki, T., Lü, S., Wu, H. Y., Tabata, S., & Harada, K. (2012). Positional cloning and characterization reveal the molecular basis for soybean maturity locus E1 that regulates photoperiodic flowering. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 109(32), 2155–2164.
Xu, M., Xu, Z., Liu, B., Kong, F., Tsubokura, Y., Watanabe, S., Xia, Z., Harada, K., Kanazawa, A., Yamada, T., & Abe, J. (2013). Genetic variation in four maturity genes affects photoperiod insensitivity and PHYA-regulated post-flowering responses of soybean. BMC Plant Biology, 13, 91.
Yermakov, A. I., Arasimovich, V. V., & Yarosh, N. P. (1987). Metody biokhimicheskogo issledovaniya rastenii [Methods of biochemical research of plants]. Agropromizdat, Leningrad (in Russian).
Zhang, L. X., Liu, W., Mesfin, T., Xu, X., Qi, Y. P., Sapey, E., Liu, L. P., Wu, T. T., Sun, S., & Han, T. F. (2020). Principles and practices of the photo-thermal adaptability improvement in soybean. Journal of Integrative Agriculture, 19(2), 295–310.
Zharikova, D. O., Chebotar, G. O., Aksyonova, E. A., Temchenko, I. V., & Chebotar, S. V. (2019). Polymorphisms in SSR-loci associated with E genes in soybean mutant lines offer perspective for breeding. Agricultural Science and Practice, 6(3), 45–55.
Завантаження
Опубліковано
Номер
Розділ
Ліцензія
Авторське право (c) 2023 І. М. Раєвській, А. С. Щоголеву
Ця робота ліцензується відповідно до ліцензії Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Цей твір ліцензовано за міжнародною ліцензією Creative Commons Attribution 4.0 .
Автори зберігають авторські права та надають журналу право на першу публікацію з роботою, яка одночасно ліцензується за ліцензією Creative Commons «Attribution» 4.0, яка дозволяє іншим ділитися роботою з визнанням авторства роботи та початкової публікації в цьому журналі.